使用方法
（一）准备工作
样品准备：确保 DNA 样品已经经过适当的提取和纯化步骤，并且其浓度和纯度符合实验要求。例如，如果是从细胞中提取的基因组 DNA，要经过蛋白酶 K 消化、酚 - 氯仿抽提和乙醇沉淀等步骤，以获得相对纯净的 DNA。
电泳设备准备：提前准备好电泳槽、琼脂糖凝胶（已正确制备并放置在电泳槽中）、电泳缓冲液（如 TAE 或 TBE 缓冲液），并且连接好电泳仪，设置好合适的电压和电泳时间。
（二）混合样品与 loading buffer
一般情况下，按照 1:5（loading buffer:DNA 样品）的体积比混合。例如，如果 DNA 样品体积为 10μL，那么需要加入 2μL 的 6×loading buffer。这样可以保证 loading buffer 中的成分能够有效地发挥作用，同时不会过度稀释 DNA 样品。使用微量移液器准确地吸取相应体积的 6×loading buffer 加入到 DNA 样品管中。
轻轻混匀，注意避免产生气泡。可以通过轻微地上下颠倒或用手指轻弹管底的方式来混合，因为气泡可能会影响加样的准确性，而且在电泳过程中可能会干扰 DNA 的迁移。
（三）加样
将混合好的含有 DNA 和 6×loading buffer 的样品，小心地加入到琼脂糖凝胶的加样孔中。使用微量移液器，将移液器的枪头垂直插入加样孔，缓慢地将样品推出枪头。加样时要注意不要让样品溢出加样孔，同时尽量避免枪头刺破凝胶，因为这可能会影响 DNA 的迁移路径和电泳结果。
（四）电泳
在完成加样后，盖上电泳槽盖子，开启电泳仪，按照预先设定的电压和时间进行电泳。例如，对于较小片段的 DNA（小于 1kb），在 1% 琼脂糖凝胶中可以使用 80 - 100V 的电压，电泳时间约为 30 - 40 分钟；对于较大片段的 DNA（大于 10kb），电压可以适当降低至 40 - 60V，电泳时间延长至 1 - 2 小时，具体情况需要根据实际的实验要求和 DNA 片段大小进行调整。在电泳过程中，可以观察示踪染料的迁移情况来判断电泳进程。
（一）准备工作
样品准备：确保 DNA 样品已经经过适当的提取和纯化步骤，并且其浓度和纯度符合实验要求。例如，如果是从细胞中提取的基因组 DNA，要经过蛋白酶 K 消化、酚 - 氯仿抽提和乙醇沉淀等步骤，以获得相对纯净的 DNA。
电泳设备准备：提前准备好电泳槽、琼脂糖凝胶（已正确制备并放置在电泳槽中）、电泳缓冲液（如 TAE 或 TBE 缓冲液），并且连接好电泳仪，设置好合适的电压和电泳时间。
（二）混合样品与 loading buffer
一般情况下，按照 1:5（loading buffer:DNA 样品）的体积比混合。例如，如果 DNA 样品体积为 10μL，那么需要加入 2μL 的 6×loading buffer。这样可以保证 loading buffer 中的成分能够有效地发挥作用，同时不会过度稀释 DNA 样品。使用微量移液器准确地吸取相应体积的 6×loading buffer 加入到 DNA 样品管中。
轻轻混匀，注意避免产生气泡。可以通过轻微地上下颠倒或用手指轻弹管底的方式来混合，因为气泡可能会影响加样的准确性，而且在电泳过程中可能会干扰 DNA 的迁移。
（三）加样
将混合好的含有 DNA 和 6×loading buffer 的样品，小心地加入到琼脂糖凝胶的加样孔中。使用微量移液器，将移液器的枪头垂直插入加样孔，缓慢地将样品推出枪头。加样时要注意不要让样品溢出加样孔，同时尽量避免枪头刺破凝胶，因为这可能会影响 DNA 的迁移路径和电泳结果。
（四）电泳
在完成加样后，盖上电泳槽盖子，开启电泳仪，按照预先设定的电压和时间进行电泳。例如，对于较小片段的 DNA（小于 1kb），在 1% 琼脂糖凝胶中可以使用 80 - 100V 的电压，电泳时间约为 30 - 40 分钟；对于较大片段的 DNA（大于 10kb），电压可以适当降低至 40 - 60V，电泳时间延长至 1 - 2 小时，具体情况需要根据实际的实验要求和 DNA 片段大小进行调整。在电泳过程中，可以观察示踪染料的迁移情况来判断电泳进程。
